Símbolo de Gene: RNASE1
>
1. Geral
>
A ribonuclease pancreática também conhecida como ribonuclease A (RNase A) ou ribonuclease 1 (RNase1) é uma enzima que catalisa a decomposição do RNA e tem um papel na digestão do RNA em espécies vertebradas. Os primeiros trabalhos focaram no RNase pancreático bovino devido à grande quantidade presente no pâncreas. Tem sido descrita como a enzima mais bem estudada do século XX, com quatro prêmios Nobel concedidos para estudos desta proteína (20). Devido aos altos níveis presentes no pâncreas bovino, a RNase1 foi historicamente considerada como uma enzima digestiva, mas com pouca utilidade em humanos e outros mamíferos não ruminantes (2) onde existe em concentrações muito mais baixas. Entretanto, a digestão do RNA ocorre no intestino de todas as espécies e o RNase1 e outros membros de sua superfamília são agora conhecidos por terem funções adicionais na defesa do hospedeiro que serão discutidas mais tarde.
Estrutura e Mecanismo de Ação
>
O RNase1 bovino foi purificado e cristalizado por Kunitz em 1939 (16) e sequenciado por Smyth, Stein e Moore em 1963 (30). Ele contém 124 aminoácidos, um peso molecular calculado de 13.683 e um excesso de resíduos básicos levando a um ponto isoelétrico de 8,5 – 9,0. Contém quatro ligações de dissulfeto e tem sido usado como modelo para estudar a dobragem de proteínas (22). Também é glicosilada em resíduos de asparagina com a forma glicosilada originalmente denominada RNase B. Devido à glicosilação e à estrutura terciária, ela funciona na maioria dos géis SDS a 18 ou 19 kDa. O RNase suíno 1 contém 125 aminoácidos (26); o RNase humano 1 contém 3 aminoácidos adicionais no terminal carboxil do que o RNase bovino1 (4). O RNase1 bovino foi a primeira enzima a ter sua estrutura tridimensional determinada. Ele tem uma forma geral como um feijão renal com o local ativo na fenda contendo His12, His119, e Lys41 (25). Outros sítios não-catalíticos de ligação ajudam a enzima a formar um complexo com o seu substrato polimérico. O RNase1 catalisa a hidrólise de ligações de 3′,5′-fosfodiester em RNA isolado quando a base do lado de 3′ é uma pirimidina (7, 11, 23). O processo é normalmente representado como ocorrendo em duas etapas, com a primeira etapa envolvendo a formação de um fosfodiéster cíclico e a segunda, a hidrólise (23). O RNase 1 não hidrolisa o DNA por falta de um grupo de 2′-OH. Isso permite que ele seja usado para remover a contaminação por RNA do DNA. Também é utilizado em ensaios de protecção de ribonuclease. O RNase 1 forma dímeros através da troca de domínio de amino terminados pela formação de ligações sulfidrílicas, de forma a manter cada local ativo (18). Enquanto mantém a função hidrolítica os dímeros adquirem uma atividade biológica adicional com dímeros, trimers e tetrâmeros possuindo atividade antitumoral
Ribonuclease A Superfamily
Os códigos do genoma humano para 122 ribonucleases separadas. A RNAse A superfamily consiste em oito ribonucleases “canônicas” com atividade enzimática e homologia estrutural ao RNase A (15). Todas são proteínas secretoras que compartilham uma estrutura terciária ligada ao dissulfeto e são capazes de degradar o RNA. Todas são codificadas em uma região apertada do cromossomo 14 tanto em humanos quanto em camundongos (27) e acredita-se que tiveram origem na duplicação de genes (3, 31). Embora o gene contenha vários exons, a região codificadora é contribuída por um único exon. O entendimento do seu papel fisiológico é incompleto, mas a maioria é importante para a defesa e angiogênese do hospedeiro, assim como para a digestão (9). O primeiro membro a ser descrito é a RNase 1 que além de ser uma enzima pancreática é produzida em uma variedade de células, incluindo células endoteliais vasculares, onde após a secreção degrada o RNA polimérico vascular e tem atividade anti-HIV-1 (15). RNase 2 e 3 são proteínas secretoras de eosinófilos chamadas neurotoxinas derivadas de eosinófilos (EDN) e proteína catiônica de eosinófilos (ECP), respectivamente (15). A RNase 4 está presente em múltiplos tecidos, mas o seu papel fisiológico não é claro. A RNase 5, também conhecida como angiogenina, induz o crescimento dos vasos sanguíneos (10). A RNase 7 é a RNase mais abundante na pele enquanto a RNase 8 é expressa na placenta (15). Genes adicionais no grupo estão relacionados com ribonucleases (RNase 9 a 13), mas suas proteínas têm mutações que impedem a atividade da RNase. Algumas das RNases segregadas ou seus oligómeros podem entrar nas células e exercer efeitos citotóxicos especialmente nas células tumorais.
Inibidor de ribonuclease
Inibidor de ribonuclease mamífero (RI) é uma proteína citosólica de 50 KDa que se liga com alta afinidade e estoquiometria 1:1 à ribonuclease pancreática, inactivando-a (8, 17). É particularmente abundante na placenta e no fígado e tem sido usada para purificar a RNase. Ela inibe todos os membros da família RNase A. A sua estrutura tridimensional é a de uma ferradura que contém repetições ricas em leucina. Embora o papel biológico não seja claro, deve ligar e inactivar qualquer RNase A membro da família RNase A escapando do caminho secreto e entrando no citoplasma.
2. Papel da libertação de ribonucleótidos no pâncreas
A maioria das células contém concentrações milimolares de ribonucleótidos mas apenas concentrações micromolares de desoxirribonucleótidos (5). Assim, a dieta contém uma mistura de ribonucleoproteínas, RNA e ribonucleotídeos. As nucleoproteínas são decompostas por protease pancreática. A visão do livro de texto é que ácidos nucléicos dietéticos são quebrados por RNase pancreática e DNase no intestino. Um estudo recente, entretanto, mostrou que a pepsina no estômago também hidrolisa o ácido nucléico, então esta digestão começa lá (19). Alimentos ricos em ribonucleoproteínas incluem carnes de órgãos, frutos do mar e legumes (5).
RNase pancreática (RNase 1) está presente em todos os pâncreas vertebrados, mas a quantidade varia muito (2). Mamíferos com grandes quantidades incluem ungulados, roedores e marsupiais herbívoros. Na vaca, o RNase compõe 20% da enzima digestiva; esta exigência é pensada devido à grande carga de RNA que é produzida pelas bactérias a partir da fermentação ruminal. Em outras espécies incluindo humanos, cães, gatos e vertebrados inferiores, o RNase está presente em quantidades muito menores e pode representar apenas 0,5 a 1% das enzimas pancreáticas. Embora existam poucos estudos, a RNase pancreática em todas as espécies parece quebrar o ácido nucleico da dieta no lúmen intestinal para os nucleotídeos, que são ainda quebrados pela fosfatase alcalina intestinal e pela 5’nucleotidase para os nucleotídeos e bases nitrogenadas livres. Portanto, a digestão dos ácidos nucléicos tem uma fase luminal e uma fase de borda de escova. Estes produtos são absorvidos por enterócitos mas a maioria é excretada na urina; alguns são usados para ressíntese principalmente no estado de jejum (13, 21, 29). Normalmente 80 a 90% dos nucleotídeos são absorvidos e estes podem tornar-se essenciais em certas doenças ou períodos de ingestão limitada ou crescimento rápido (5).
Ribonuclease é sintetizada em células acinares por ER rugosas, dobradas e embaladas em grânulos de zymogen a partir dos 20 dias de gestação no rato (33). A dobra ocorre muito mais rapidamente nas células do que na proteína isolada e, exceto por uma pequena quantidade de dímeros, qualquer proteína que não termine como um monômero dobrado é degradada (12). Ela é secretada no meio paralelamente a outras enzimas digestivas por lobos pancreáticos e acini estimulados com CCK ou análogos colinérgicos (14, 24, 28). A síntese da RNase 1 é reduzida em 50% na diabetes experimental, mas muito menos que a diminuição da amilase.
3. Ferramentas para o estudo da Ribonuclease1
a. Anticorpos
Biocompare (www.biocompare.com) lista 394 anticorpos de ribonuclease de 32 fornecedores. Alguns são específicos da espécie enquanto outros são específicos para o RNase1 ou outros membros da família. Não testamos nenhum destes anticorpos.
b. Atividade de ribonuclease
Atividade de ribonuclease primária utilizada a hidrólise do RNA da levedura; utilizamos um ensaio descrito por Anfinsen (1) para medir a secreção de ribonuclease pancreática por acini pancreática de rato isolado (24). Estes ensaios, entretanto, não são específicos para o RNase1 e funcionaram para o estudo da secreção de acinar pancreático porque o RNase1 é a principal forma presente no acini pancreático. Um ensaio também foi descrito usando a hidrólise da cittidina 2′-3′-fosfato (6). Recentemente foi desenvolvido um ensaio de fluorescência quantitativa baseado na ligação do brometo de etídio ao RNA da levedura (32).
4. Referências
- Anfinsen CB, Redfield RR, Choate WL, Page J, e Carroll WR. Estudos sobre a estrutura bruta, ligações cruzadas e sequências de terminais em ribonuclease. J Biol Chem 207: 201-210, 1954. PMID: 13152095
- Barnard EA. Função biológica da libertação de ribonuclease pancreática. Natureza 221: 340-344, 1969. PMID: 4974403
- Beintema JJ, e Kleineidam RG. O ribonuclease Uma superfamília: discussão geral. Cell Mol Life Sci 54: 825-832, 1998. PMID: 9760991
- Beintema JJ, Wietzes P, Weickmann JL, e Glitz DG. A sequência de aminoácidos da ribonuclease pancreática humana. Biochem Anal 136: 48-64, 1984. PMID: 6201087
- Carver JD, e Walker, WA. O papel dos nucleotídeos na nutrição humana. J Nutr Biochem 6: 58 – 72, 1995.
- Crook EM, Mathias AP, e Rabin BR. Ensaio espectrofotométrico da ribonuclease pancreática bovina pelo uso de ctidina 2′:3′-fosfato. Biochem J 74: 234-238, 1960. PMID: 13812977
- Cuchillo CM, Nogues MV, e Raines RT. Ribbonuclease pancreática bovina: cinquenta anos do primeiro mecanismo de reacção enzimática. Bioquímica 50: 7835-7841, 2011. PMID: 21838247
- Dickson KA, Haigis MC, e Raines RT. Inibidor de Ribonuclease: estrutura e função. Prog Nucleic Acid Res Mol Biol 80: 349-374, 2005. PMID: 16164979
- Dyer KD, e Rosenberg HF. O RNase uma superfamília: geração de diversidade e defesa inata do hospedeiro. Mol Divers 10: 585-597, 2006. PMID: 16969722
- Fett JW, Strydom DJ, Lobb RR, Alderman EM, Bethune JL, Riordan JF, e Vallee BL. Isolamento e caracterização da angiogenina, uma proteína angiogénica de células cancerígenas humanas. Bioquímica 24: 5480-5486, 1985. PMID: 4074709
- Findlay D, Herries DG, Mathias AP, Rabin BR, e Ross CA. O local ativo e mecanismo de ação da liberação da ribonuclease pancreática bovina. Natureza 190: 781-784, 1961. PMID: 13699542
- Geiger R, Gautschi M, Thor F, Hayer A, e Helenius A. Dobra, controle de qualidade, e secreção de ribonuclease pancreática em células vivas. J Biol Chem 286: 5813-5822, 2011. PMID: 21156800
- Ho CY, Miller KV, Savaiano DA, Crane RT, Ericson KA, e Clifford AJ. Absorção e metabolismo de purinas administradas oralmente em ratos alimentados e jejuados. J Nutr 109: 1377-1382, 1979. PMID: 458492
- Iwanij V, e Jamieson JD. Análise bioquímica de proteínas secretoras sintetizadas pelo pâncreas de rato normal e por células tumorais de acinar pancreático. J Cell Biol 95: 734-741, 1982. PMID: 6185502
- Koczera P, Martin L, Marx G, e Schuerholz T. The Ribonuclease A Superfamily in Humans: Os RNases Canónicos como a Fortaleza da Imunidade Inata. Int J Mol Sci 17: 2016. PMID: 27527162
- Kunitz M. Crystalline Ribonuclease. J Gen Physiol 24: 15-32, 1940. PMID: 19873197
- Lee FS, e Vallee BL. Estrutura e ação do inibidor de ribonuclease (angiogenina) de mamíferos. Prog Nucleic Acid Res Mol Biol 44: 1-30, 1993. PMID: 8434120
- Libonati M. Ações biológicas dos oligômeros da ribonuclease A. Cell Mol Life Sci 61: 2431-2436, 2004. PMID: 15526151
- Liu Y, Zhang Y, Dong P, An R, Xue C, Ge Y, Wei L, e Liang X. A Digestão dos Ácidos Nucleicos Começa no Estômago. Rep. Sci 5: 11936, 2015. PMID: 26168909
- Marshall GR, Feng JA, e Kuster DJ. De volta ao futuro: ribonuclease A. Biopolímeros 90: 259-277, 2008. PMID: 17868092
- McAllan AB. A degradação dos ácidos nucléicos e a remoção dos produtos de decomposição do intestino delgado dos bois. Br J Nutr 44: 99-112, 1980. PMID: 6158999
- Moore S, e Stein WH. Estruturas químicas de ribonuclease pancreática e desoxirribonuclease. Ciência 180: 458-464, 1973. PMID: 4573392
- Nogues MV, Vilanova M, e Cuchillo CM. Ritibonuclease A pancreática bovina como modelo de uma enzima com múltiplos locais de ligação do substrato. Biochim Biophys Acta 1253: 16-24, 1995. PMID: 7492594
- Otsuki M, e Williams JA. Efeito da diabetes mellitus na regulação da secreção enzimática por acinios pancreáticos de ratos isolados. J Clin Invest 70: 148-156, 1982. PMID: 6177717
- Raines RT. Ribonuclease A. Chem Rev 98: 1045-1066, 1998.
- Reinhold VN, Dunne FT, Wriston JC, Schwarz M, Sarda L, e Hirs CH. O isolamento da ribonuclease porcina, uma glicoproteína, do suco pancreático. J Biol Chem 243: 6482-6494, 1968. PMID: 5715511
- Samuelson LC, Wiebauer K, Howard G, Schmid RM, Koeplin D, e Meisler MH. Isolamento do gene murino ribonuclease Rib-1: estrutura e expressão específica do tecido no pâncreas e na glândula parótida. Ácidos nucléicos Res 19: 6935-6941, 1991. PMID: 1840677
- Scheele GA, e Palade GE. Estudos sobre o pâncreas de porquinho-da-índia. Descarga paralela de atividades enzimáticas exócrinas. J Biol Chem 250: 2660-2670, 1975. PMID: 1123325
- Schwenk M, Hegazy E, e Lopez del Pino V. Captação de uridina por células epiteliais intestinais isoladas de cobaia. Biochim Biophys Acta 805: 370-374, 1984. PMID: 6210111
- Smyth DG, Stein WH, e Moore S. A sequência de resíduos de aminoácidos na ribonuclease pancreática bovina: revisões e confirmações. J Biol Chem 238: 227-234, 1963. PMID: 13989651
- Sorrentino S. As oito ribonucleases “canônicas” humanas: diversidade molecular, propriedades catalíticas e ações biológicas especiais das proteínas enzimáticas. FEBS Lett 584: 2194-2200, 2010. PMID: 20388512
- Tripathy DR, Dinda AK, e Dasgupta S. Um ensaio simples para a atividade de ribonucleases na presença de brometo de etídeo. Biochem Anal 437: 126-129, 2013. PMID: 23499964
- Van Nest GA, MacDonald RJ, Raman RK, e Rutter WJ. Proteínas sintetizadas e secretadas durante o desenvolvimento pancreático de ratos. J Cell Biol 86: 784-794, 1980. PMID: 7410479